Print Version
   Close

URL: http://www.mycotoxins.info/ru/deistvie/akvakultura/?tx_cookiepolicybar_pi1%5Baction%5D=close&tx_cookiepolicybar_pi1%5Bcontroller%5D=CookieBar&cHash=199d575f76afd19169463c73470893c8

Действие микотоксинов на водные виды организмов

Исследований по изучению действия микотоксинов на водные виды организмов недостаточно, и в большинстве случаев используемые в них концентрации микотоксинов нереально высоки. Тем не менее, в последние годы было опубликовано несколько важных статей и обзоров, содержащих интересные результаты.

Тема выявления микотоксинов в кормах для водных организмов и их действие продолжают привлекать внимание, особенно в связи с общей тенденцией замены дорогостоящих источников белка животного происхождения более дешевыми растительными белками. Стандартные процедуры производства корма, такие как экструзия, не позволяют расщепить молекулы микотоксинов, обладающие химической и термической стабильностью.

Афлатоксины

Aflatoxin B1
Aflatoxin B1

Афлатоксин (АФЛ) является высококанцерогенным микотоксином, и его концентрация строго регулируется на многих рынках во всем мире. Некоторые виды водных организмов чувствительны к этому микотоксину. В 2010 году проведенное на золотистом спаре (Sparus aurata) исследование показало, что поражение гепатоцитов под действием АФЛ B1 происходит при различной длительности воздействия (24, 48 и 72 часа).1 Концентрация от 20 до 100 мкг/кг АФЛ В1 в корме может отрицательно влиять на прирост массы тела и коэффициент конверсии корма (ККК) у белуги (Huso huso). Также у этих рыб после 60 дней воздействия наблюдались изменения в тканях печени, отложения жира и некроз.2 В опыте на гибриде осетра (Acipenser ruthenus x A. baeri) при кормлении рационом, содержащим 80 мкг/кг АФЛ B1, смертность увеличивалась после 12 дней воздействия. Кроме того, наблюдались гистопатологические изменения, такие как некроз, появление воспалительных клеток и увеличение желчных путей, а также накопление АФЛ B1 в мышцах и печени.3 Присутствие АФЛ в корме нильской тиляпии в концентрации от 100 до 2500 мкг/кг оказывало отрицательное влияние на скорость роста и коэффициент конверсии корма.4,5,6,7 Проведенные на тиляпии исследования выявили, что более низкие концентрации АФЛ (50 мкг/кг) изменяют параметры функции печени (некроз и вакуолизация гепатоцитов).4 У роху (Labeo rohita) АФЛ B1 индуцировал угнетение иммунной системы и окислительное повреждение первичных органов-мишеней, таких как печень, почки и мозг. Этот микотоксин также отрицательно влиял на показатели прироста массы тела, выживаемости и эффективности использования корма у красного горбыля (Sciaenops occellatus). Тихоокеанские голубые креветки восприимчивы к АФЛ B1 при относительно высоких концентрациях (LD50 = 100 мкг/кг через 24 часа). Черные тигровые креветки еще более чувствительны: 50 мкг/кг АФЛ B1 было достаточно, чтобы вызвать снижение массы тела (МТ) на 46-59% в группе, получавшей контаминированный корм, по сравнению с контрольной группой.8

больше об Афлатоксинах

Фумонизины

Fumonisin-B1
Fumonisin-B1

Исследований, изучающих действие фумонизинов (ФУМ) также недостаточно. У канальных сомов, подвергшихся воздействию фумонизина B1 (ФУМ B1) в дозе 100 мкг/кг, были показаны изменения в метаболизме сфинголипидов, что доказывает токсичность ФУМ для этих рыб.18 ФУМ B1 в концентрации ниже 100 мкг/кг вызывал рак у одномесячной форели.19 ФУМ B1, присутствующий в корме в концентрации от 10 до 150 мкг/кг, отрицательно влиял на рост молоди нильской тиляпии.6 Также ФУМ В1 в концентрации до 10 000 мкг/кг корма был токсичен для карпа. У последнего было выявлено снижение массы тела и изменение гематологических параметров в органах-мишенях.20 Балтийский лосось (Salmon salar), по-видимому, более устойчив к фумонизинам. Действительно, оказалось, что ФУМ B1 в концентрации до 20 000 мкг/кг не повлиял на рыб, хотя в течение опыта у них наблюдалось снижение аппетита (Gonçalves et al., 2016).21,22 Исследований на креветках проведено недостаточно, однако некоторые виды, такие как тихоокеанская белая креветка (Litopenaeus vannamei), продемонстрировали чувствительность к ФУМ В1 в концентрации до 200 мкг/кг. Действие на креветок включает снижение концентрации растворимого мышечного белка и изменение термодинамических свойств миозина (мышечной текстуры – параметра, который может значительно влиять на продуктивность).22,23 На основании вышеупомянутых исследований и учитывая низкие средние концентрации ФУМ B1, использованные при их проведении, можно сделать вывод, что фумонизины могут влиять на несколько видов водных организмов.

больше о Фумонизинах

Дезоксиниваленол

T2-Toxin
T2-Toxin

Некоторые виды водных организмов чувствительны к дезоксиниваленолу (ДОН). Например, радужная форель чувствительна даже к довольно низким концентрациям этого микотоксина (300-2600 мкг/кг), и у нее отмечается значительное ухудшение роста, потребления корма, эффективности использования корма, а также использования белка и энергии.9 Атлантический лосось реагирует на ДОН аналогичным образом.10 ДОН в концентрации между 300 и 1000 мкг/кг отрицательно влияет на скорость роста и массу тела тихоокеанских белых креветок.11 ДОН даже в низких дозах угнетает иммунную систему карпа.12

больше о Дезоксиниваленоле

Охратоксины

Ochratoxin-A
Ochratoxin-A

Действие этого микотоксина изучалось лишь на немногих видах, включая аквариумных рыбок данио-рерио и радужную форель. Охратоксин (ОХР) оказывал мутагенное и токсическое действие. Авторы сообщали о возникновении у данио-рерио пороков развития.24 У форели в некоторых исследованиях регистрировалась дегенерация органов, включая печень и почки, сопровождающаяся повышенной смертностью.22 Охратоксин токсичен для канального сома и приводит к снижению прироста массы тела, ухудшению ККК и гистопатологическим повреждениям.25 Также ОХР в концентрации 15 мкг/кг корма ухудшал показатели роста и ККК у карпа.26

больше об Охратоксинах

Зеараленон

Zearalenone
Zearalenone

Действие зеараленона (ЗЕН) изучено неполностью. В имеющемся небольшом количестве исследований была продемонстрирована способность этого микотоксина влиять на репродуктивные показатели некоторых видов водных организмов. Было показано, что у данио-рерио (Danio rerio) присутствие ЗЕН уменьшало частоту откладывания икры. В другом исследовании тех же авторов у личинок данио-рерио, подвергшихся воздействию ЗЕН в дозе 500 мкг/кг, были выявлены отклонения в развитии глаз и кривизнe оси тела.14 Гистологические изменения печени были обнаружены у черных тигровых креветок, получавших корм с ЗЕН в концентрации от 500 до 1000 мкг/кг.15 ЗЕН отрицательно влиял на гематологические параметры (количество лейкоцитов) у карпа (Cyprinius carpio); также в мышцах находили следы ЗЕН и его вторичного метаболита α-зеараленола.16 У радужной форели (Oncorhynchus mykiss), получавшей ЗЕН в концентрации до 10 000 мкг/кг, выявляли дефекты коагуляции крови и нарушения процессов отложения железа.17

больше о Зеараленоне

Синергическое действие на аквакультуру

Вопросы синергического действия микотоксинов на аквакультуру изучались лишь в небольшом количестве исследований. ФУМ B1 способствовал возникновению афлатоксин-инициированной опухоли печени у форели, что подтверждает синергическое действие этих микотоксинов. Авторы предположили корреляцию между нарушением сфинголипидного механизма, характерного для ФУМ B1, и изменением пути передачи сигналов сфинголипидов.22 Аддитивный эффект токсинов АФЛ B1 и T-2 был доказан при изучении их комбинированного действия на гамбузий (Gambusia affinis). Действие АФЛ B1 и ДОН изучалось на карпе (Cyprinius carpio), и был сделан вывод о том, что совместное токсическое действие двух микотоксинов было сильнее, чем их действие по отдельности.

Действие микотоксинов на рыбу

АФЛ В1 - Афлатоксин B1 | АФЛ M1 - Афлатоксин M1 | ДОН - Дезоксиниваленол | ФУМ - Фумонизины | OХР – Охратоксин А | Т-2 - Т-2 Токсин | HT-2 - HT-2 Токсин | ЗЕН - Зеараленон | Спорынья - Алкалоиды спорыньи

Действие микотоксинов на креветок

АФЛ В1 - Афлатоксин B1 | АФЛ M1 - Афлатоксин M1 | ДОН - Дезоксиниваленол | ФУМ - Фумонизины | OХР – Охратоксин А | Т-2 - Т-2 Токсин | HT-2 - HT-2 Токсин | ЗЕН - Зеараленон | Спорынья - Алкалоиды спорыньи

Источники
  1. Centoducati G, Santacroce MP, Lestingi A, Casalino E, Crescenzo G (2010) Characterization of the cellular damage induced by Aflatoxin B1 in sea bream (Sparus aurata Linnaeus, 1758) hepatocytes. Italian Journal of Animal Science; Vol 8, No 2s (2009): Proceedings of the 18th ASPA Congress, Palermo, June 9-12, 2009.
  2. Sepahdari A, Ebrahimzadeh Mosavi HA, Sharifpour I, Khosravi A, Motallebi AA, Mohseni M et al. (2010) Effects of different dietary levels of AFB1 on survival rate and growth factors of Beluga (Huso huso). Iranian Journal of Fisheries Sciences 9: 141–150.
  3. Rajeev Raghavan P, Zhu X, Lei W, Han D, Yang Y, Xie S (2011) Low levels of Aflatoxin B1 could cause mortalities in juvenile hybrid sturgeon, Acipenser ruthenus ♂ A. baeri♀. Aquaculture Nutrition 17: e39–e47.
  4. El-Banna R, Teleb HM, Hadi MM, Fakhry FM (1992) Performance and tissue residue of tilapias fed dietary aflatoxin. Veterinary Medical Journal 40: 17–23.
  5. Chávez-Sanchez MC, Martınez Palacios CA, Osorio MI (1994) Pathological effects of feeding young Oreochromis niloticus diets supplemented with different levels of aflatoxin B1. Aquaculture 127: 49–60.
  6. Tuan NA, Manning BB, Lovell RT, Rottinghaus GE (2003) Responses of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fed diets containing different concentrations of moniliformin or fumonisin B1. Aquaculture 217: 515–528.
  7. Oliveira STLD, Veneroni-Gouveia G, Santurio JM, Costa MMD (2013) Aeromonas hydrophila in tilapia (Oreochromis niloticus) after the intake of aflatoxins. Arquivos do Instituto Biologico 80: 400–406.
  8. Bintvihok A, Ponpornpisit A, Tangtrongpiros J, Panichkriangkrai W, Rattanapanee R, Doi K et al. (2003) Aflatoxin contamination in shrimp feed and effects of aflatoxin addition to feed on shrimp production. Journal of Food Protection 66: 882–885.
  9. Hooft JM, Elmor A, Ibraheem EH, Encarnaçao P, Bureau DP (2011) Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) is extremely sensitive to the feed-borne Fusarium mycotoxin deoxynivalenol (DON). Aquaculture 311: 224–232.
  10. Döll S, Baardsen G, Koppe W, Stubhaug I, Dänicke S (2010) Effects of increasing concentrations of the mycotoxins deoxynivalenol, zearalenone or ochratoxin A in diets for Atlantic salmon (Salmo salar) on growth performance and health. In The 14th International Symposium on Fish Nutrition and Feeding (Qingdao, China,), pp. 120.
  11. Trigo-Stockli DM, Obaldo LG, Dominy WG, Behnke KC (2000) Utilization of deoxynivalenol-contaminated hard red winter wheat for shrimp feeds. Journal of the World Aquaculture Society 31: 247–254.
  12. Pietsch C, Michel C, Kersten S, Valenta H, Dänicke S, Schulz C et al. (2014) In vivo effects of deoxynivalenol (DON) on innate immune responses of carp (Cyprinus carpio L.). Food and Chemical Toxicology 68: 44–52.
  13. Schwartz P, Thorpe KL, Bucheli TD, Wettstein FE, Burkhardt-Holm P (2010) Short-term exposure to the environmentally relevant estrogenic mycotoxin zearalenone impairs reproduction in fish. Science of The Total Environment 409: 326–333.
  14. Schwartz P, Bucheli TD, Wettstein FE, Burkhardt-Holm P (2013) Life-cycle exposure to the estrogenic mycotoxin zearalenone affects zebrafish (Danio rerio) development and reproduction. Environmental Toxicology 28: 276–289.
  15. Supamattaya K, Bundit O, Boonyarapatlin M, Schatzmayr G, Chittiwan V (2005) Effects of mycotoxin T-2 and zearalenone on histopathological changes in black tiger shrimp (Penaeus monodon Fabricius). Songklanakarin Journal of Science and Technology 27: 91–99.
  16. Pietsch C, Kersten S, Valenta H, Dänicke S, Schulz C, Burkhardt-Holm P et al. (2015) Effects of dietary exposure to zearalenone (ZEN) on carp (Cyprinus carpio L.). Toxins 7: 3465.
  17. Wózny M, Brzuzan P, Gusiatin M, Jakimiuk E, Dobosz S, Kuzminski H (2012) Influence of zearalenone on selected biochemical parameters in juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Polish Journal of Veterinary Sciences 15: 221–225.
  18. Lumlertdacha S, Lovell RT (1995) Fumonisin-contaminated dietary corn reduced survival and antibody production by channel catfish challenged with Edwardsiella ictaluri. Journal of Aquatic Animal Health 7: 1–8.
  19. Riley RT, Enongene E, Voss KA, Norred WP, Meredith FI, Sharma RP et al. (2001) Sphingolipid perturbation as mechanisms for fumonisin carcinogenesis. Environmental Health Perspectives 109:301-308.
  20. Petrinec Z, Pepeljnjak S, Kovacic S, Krznaric A (2004) Fumonisin B1 causes multiple lesions in common carp (Cyprinus carpio). DTW. Deutsche Tierarztliche Wochenschrift, 111: 358–363.
  21. Garcıa EC, (2013) Effects of Fumonisin B1 on Performance of Juvenile Baltic Salmon (Salmo salar). Faculty of Science, University of Jyväskylä, Finland.
  22. Gonçalves RA, Naehrer K and Santos GA (2016)Occurrence of mycotoxins in commercial aquafeeds in Asia and Europe: a real risk to aquaculture? Reviews in Aquaculture (2016) 0, 1–18.
  23. García-Morales M-H, Pérez-Velázquez M, González-Felix ML, Burgos-Hernández A, Cortez-Rocha M-O, Bringas-Alvarado L et al. (2013) Effects of fumonisin B1-containing feed on the muscle proteins and ice-storage life of white shrimp (Litopenaeus vannamei). Journal of Aquatic Food Product Technology 24: 340–353.
  24. Debeaupuis JP, Marche C, Lafont P (1984) Embryotoxicity and teratogenicity of ochratoxin A in the zebra-fish (Brachydanio rerio). Microbiologie, Aliments, Nutrition 2: 257–269.
  25. Manning BB, Ulloa RM, Li MH, Robinson EH, Rottinghaus GE (2003) Ochratoxin A fed to channel catfish (Ictalurus punctatus) causes reduced growth and lesions of hepatopancreatic tissue. Aquaculture 219: 739–750.
  26. Agouz HM, Anwer W (2011) Effect of Biogen® and Myco-Ad® on the growth performance of common Carp (Cyprinus carpid) fed a mycotoxin contaminated aquafeed. Journal of Fisheries and Aquatic Science 6: 334–345.



BIOMIN Holding GmbH, Erber Campus 1, 3131 Getzersdorf, Austria
Tel.: +43 2782 803 0, office@biomin.net