Print Version
   Close

URL: http://www.mycotoxins.info/ru/deistvie/ptica/?tx_cookiepolicybar_pi1%5Baction%5D=close&tx_cookiepolicybar_pi1%5Bcontroller%5D=CookieBar&cHash=199d575f76afd19169463c73470893c8

Действие микотоксинов на птицу

Чувствительность сельскохозяйственной птицы к микотоксинам неоднородна – у разных видов птицы проявляется различное токсическое действие микотоксинов. Утки, гуси и индейки, по-видимому, более восприимчивы к этим токсичным вторичным метаболитам, чем бройлеры.

Афлатоксины

Aflatoxin B1
Aflatoxin B1

Распространенными симптомами, вызываемыми афлатоксинами, являются снижение показателей выращивания – ухудшение прироста массы тела и коэффициента конверсии корма (ККК), а также изменение массы и размера различных органов, таких как печень, селезенка, почки, фабрициева сумка и тимус. Афлатоксины (АФЛ) вызывают нарушения в процессе вывода из яйца, что приводит к увеличению количества выбракованных в начале производственного цикла цыплят.1 Кроме того, АФЛ подавляют иммунную систему; они влияют на врожденные, клеточно-опосредованные и гуморальные реакции, вызывая такие симптомы, как изменение поведения (птицы, стоящие вместе в группах) и другие признаки, связанные с нервными расстройствами.2,3,4 Интоксикация афлатоксином B1 (АФЛ B1) влияет на клеточно-опосредованный иммунитет посредством уменьшения концентрации альбумина и глобулина, что означает важную роль АФЛ В1 в ингибировании синтеза белка.5 Кроме того, при кормлении цыплят-бройлеров кормом, контаминированным АФЛ В1, были выявлены нарушения основных биохимических параметров сыворотки крови, барьерной функции кишечника, усвояемости энергии и аминокислот.6 Остаточные количества АФЛ В1 обнаруживали в яйцах, тканях (почках, печени, мышцах, яйцеклетках) и крови кур-несушек.7 Афлатоксин М1, классифицированный Международным агентством по исследованию рака (IARC) как канцероген 1-й группы (высококанцерогенный для человека), можно обнаружить в почках.8  

больше об Афлатоксинах

Алкалоиды спорыньи

Ergotamine
Ergotamine

Алкалоиды спорыньи могут вызывать нейротоксическое действие, приводящее к сокращению потребления корма, так как птицы неохотно двигаются и могут испытывать затруднения при дыхании.41 У птиц, пораженных алкалоидами спорыньи, отмечали ухудшение роста и снижение производства яиц. Наиболее характерными патологическими изменениями являются гангренозные поражения на пальцах ног, клюве и когтях.42  

больше об Алкалоидах спорыньи

Фумонизины

Fumonisin-B1
Fumonisin-B1

Основными симптомами, наблюдаемыми при введении фумонизина (ФУМ) в корм птицы, являются снижение массы тела и среднесуточного прироста массы – вследствие модуляции функций кишечника и нарушения его целостности, – а также увеличение массы печени и мышечного желудка с последующим увеличением отношения сфинганина к сфингозину (Sa/So).30,31,32 Проведенные в 2015 году исследования на цыплятах-бройлерах выявили значительную модуляцию отношения Sa/So в печени, почках, тощей и слепой кишке. В тонком кишечнике происходила активация провоспалительных цитокинов, что указывало на то, что животные испытывали стресс.30 Наличие ФУМ в корме является предрасполагающим фактором к развитию некротического энтерита у цыплят-бройлеров.31 В проведенном в 2015 году исследовании было выявлено, что птица, получающая корм, содержащий смесь ФУМ и Clostridium perfringens, была более предрасположена к развитию некротического энтерита, в сравнении с контрольной группой, подвергавшейся только заражению C. perfringens.31 По мнению авторов, одной из причин этого могло быть участие ФУМ в модуляции микробиоты кишечника, что способствовало росту C. perfringens.31, 32 Кроме того, у группы, получавшей загрязненный ФУМ корм, было выявлено значительное изменение отношения Sa/So, а также уменьшение высоты ворсинок и глубины крипт в подвздошной кишке.33 Подострое воздействие ФУМ В1 на цыплят-бройлеров индуцировало окислительный стресс печени, одновременно с накоплением Sa/So.28 Аналогичное действие наблюдалось у индеек, которые, по-видимому, еще более чувствительны к ФУМ.36,37 У цыплят, потреблявших загрязненный ФУМ В1 корм, также отмечалось действие на иммунную систему, например, снижение числа лейкоцитов.38 Кроме того, ФУМ B1 вызывал морфологические и функциональные изменения (количество и фагоцитарная способность) популяции перитонеальных макрофагов цыплят, что означает, что воздействие ФУМ B1 может повышать восприимчивость цыплят к бактериальным инфекциям.39 В исследовании накопления ФУМ в тканях тела птицы 30-недельные куры-несушки были обработаны 14C-ФУМ B1внутривенно (2 мг/кг ж.м.) или перорально (2 мг/кг ж.м.); значимых количеств остатков ФУМ (<10-15 нг фумонизина/г) в тканях обнаружено не было, что свидетельствует о незначительной опасности его переноса в продукцию для человека.40

больше о Фумонизинах

Охратоксины

Ochratoxin-A
Ochratoxin-A

К охратоксинам высокочувствительны молодые цыплята и индейки.4 Эти нефротоксины подавляют потребление корма, рост птицы и производство яиц и оказывают отрицательное влияние на качество яичной скорлупы.2 Воздействие охратоксина (ОХР) на птицу может снижать концентрацию иммуноглобулина в сыворотке крови и изменять клеточный, гуморальный и врожденный виды иммунного ответа.28 Кроме того, ОХР может усиливать воспаление в органах-мишенях, прежде всего в почках, одновременно уменьшая способность иммунных клеток реагировать на воспаление.29  

больше об Охратоксинах

Трихотецены

T2-Toxin
T2-Toxin

Трихотецены типа А

Трихотецены типа A (Т-2 токсин, HT-2 токсин, диацетоксисирпенол) вызывают серьезную озабоченность в птицеводстве, поскольку могут приводить к значительным потерям продуктивности. Эти микотоксины высокотоксичны для домашней птицы, особенно цыплят, что подтверждено очень низкими значениями LD50 для них (2 мг/кг для диацетоксиксирпенола и 4 мг/кг для Т-2 токсина).4 В частности, токсин Т-2 вызывает снижение потребления корма, массы тела (МТ) и производства яиц, вызывает поражение полости рта и ухудшение усвояемости питательных веществ.9 Кроме того, Т-2 токсин может сокращать производство яиц и увеличивать количество надтреснутых яиц.10 Т-2 токсин является цитотоксичным для куриных макрофагов in vitro.18 

Трихотецены: дезоксиниваленол (ДОН)

В отношении ДОН впервые был выявлено провоспалительное и иммуномодулирующее действие. Этот микотоксин может нарушать барьерную функцию и целостность кишечника, влияя на площадь поверхности кишечника и функцию межклеточных соединений.11, 12, 13 Нарушения барьерной функции сопровождаются повышенной проницаемостью эпителия и, как следствие, переносом патогенов и других токсичных агентов, а также неспецифическим воспалительным ответом и чрезмерной стимуляцией иммунной системы кишечника.11,12,13 В этой связи, некоторые исследования показали, что ДОН – даже в концентрациях ниже допустимого в ЕС уровня – является фактором, способствующим развитию некротического энтерита и кокцидиоза у домашней птицы.32,45,46

В 2012 году было проведено исследование по изучению токсического действия ДОН и его производных (3-AДОН и 15-AДОН) на моделях in vitro с использованием линии эпителиальных клеток кишечника, ex vivo с использованием кишечных эксплантатов и in vivo – на особях, которым скармливали зараженный микотоксинами корм.14 Было продемонстрировано значительное влияние ДОН и его производных на морфологию кишечника. ДОН значительно уменьшал размер ворсинок, площадь всасывания и площадь эпителиальных клеток. Что касается его производных, исследование показало, что 3-AДОН обладал меньшей токсичностью, тогда как 15-AДОН, напротив, мог вызывать больше гистологических повреждений, чем ДОН или 3-AДОН.14 Скармливание загрязненного ДОН корма может приводить к снижению продуктивности, вызванному ухудшением потребления корма и уменьшением прироста массы тела, к эрозиям и повреждениям слизистой оболочки мускульного желудка, ухудшению гематологических параметров, снижению уровня минеральных веществ и глюкозы в сыворотке крови.15 Согласно данным литературы, ДОН может значительно влиять на вес и толщину яичной скорлупы.16 Трихотецены также подавляют клеточные и гуморальные иммунные реакции. В частности, ДОН способствует апоптозу лейкоцитов и уменьшает титры гуморальных антител к возбудителю Ньюкаслской болезни у 18-недельных молодок.20,21

больше о Трихотеценах

Зеараленон

Zearalenone
Zearalenone

В сравнении с другими видами, такими как  Opens internal link in current windowсвиньи,  домашняя птица менее подвержена воздействию трихотеценов типа B и также менее чувствительна к ним.17,18 Тем не менее, зеараленон (ЗЕН) может оказывать определенное отрицательное действие на воспроизводство птицы и выводимость оплодотворенных яиц. Как правило, кормление различными токсинами, вырабатываемыми Fusarium, такими как ДОН, ЗЕН и фузариновая кислота, приводит к значительному снижению иммунологических параметров, в частности уровня содержания в желчи иммуноглобулина A – важного фактора защиты от бактерий и вирусов.19

больше о Зеараленоне

Накопление в продуктах животного происхождения

Яйца не являются существенным источником ДОН в пище для людей, поскольку ни основное соединение, ни его конъюгаты-производные не обнаруживаются в значительных количествах в желтке и белке яиц кур-несушек.23 Аналогичные выводы можно сделать о накоплении ДОН в мясе индейки, хотя следы этого микотоксина (2 нг/мл и 4 нг/мл) были обнаружены в желчи.24 Согласно данным литературных источников, у птиц, которым скармливали 0,25 мг/кг массы тела радиоактивно меченого T-2 токсина, происходило его накопление в яйцах.25, 26 Максимальные остатки в яйцах были обнаружены через 24 часа после скармливания – 0,04% от общей примененной дозы в желтке и 0,13% в белке. Следы ЗЕН были обнаружены в желчи.24, 27 

Синергическое действие на птицу

PoultryАфлатоксин B1 (АФЛ B1) при одновременном скармливании цыплятам-бройлерам с ОХР проявляет синергическое действие, поражая печень и почки.43 Кроме того, в литературных источниках сообщается, что ткань печени бройлеров, получавших корм, контаминированный ОХР и АФЛ B1, содержала заметно более высокие концентрации ОХР в сравнении с аналогичной тканью печени после скармливания бройлерам корма, содержавшего только ОХР.33 ДОН значительно увеличивает тяжесть Т-2-токсин-индуцированных поражений. Согласно данным литературы, взаимодействие между ФУМ и монилиформином значительно влияло на гематологические параметры, тогда как ФУМ и T-2 в сочетании с фузариновой кислотой увеличивали смертность эмбрионов и усиливали поражение ротовой полости, а также повышали уровень смертности.44 Заражение цыплят-бройлеров Eimeria spp. – возбудителями кокцидиоза – и смесью ФУМ и ДОН приводит к метаболическим и иммунологическим нарушениям, которые усиливают тяжесть течения кокцидиоза даже при субклиническом воздействии микотоксинов.45

Недавно было проведено исследование влияния ДОН и ФУМ на барьерную функцию кишечника, а точнее слизистую оболочку и антиоксидантный ответ на окислительный стресс, у цыплят-бройлеров.46 Авторы пришли к выводу, что одновременное введение в корм ДОН и ФУМ в концентрациях, близких к максимально допустимому в Европейском союзе уровню (5 мг ДОН и 20 мг ФУМ B1 + ФУМ B2 на кг корма), отрицательно влияло на слизистую оболочку кишечника и некоторые механизмы антиоксидантной защиты кишечного эпителия.46 В частности, ДОН и ФУМ воздействовали на слизистую оболочку двенадцатиперстной кишки путем подавления экспрессии генов кишечного муцина (МУЦ) 2 и переносчика цинка (ZnT)-1 в кишечнике, а также изменения состава моносахарида муцина.46 Кроме того, оба микотоксина нарушали внутриклеточный гомеостаз метионина, который важен для сохранения критически важной антиоксидантной активности клетки.46

Краткое описание синергического и аддитивного действия микотоксинов на домашнюю птицу представлено ниже на Рисунке 1.

Рисунок 1: Синергическое и аддитивное действие на птицу

АФЛ В1 - Афлатоксин B1; ФУМ В1 – Фумонизин В1; ДОН – Дезоксиниваленол; OХР – Охратоксин А; ФК – Фузариновая кислота; ДАС – Диацетоксисирпенол; ЦПК – Циклопиазоновая кислота; МОН - Монилиформин

Красная линия: синергическое действие
Пунктирная линия: аддитивное действие

Действие микотоксинов на птицу

АФЛ В1 - Афлатоксин B1 | АФЛ M1 - Афлатоксин M1 | ДОН - Дезоксиниваленол | ФУМ - Фумонизины | OХР – Охратоксин А | Т-2 - Т-2 Токсин | HT-2 - HT-2 Токсин | ЗЕН - Зеараленон | Спорынья - Алкалоиды спорыньи

Источники
  1. Cilievici, O., Cordos, I., Ghidus, E., and Moldovan, A. (1980). The toxic and teratogenic effect of aflatoxin B1 on the chick embryo development. Morphol. Embryol. (Bucur.): 309-314.
  2. CAST Report. (2003). Mycotoxins: risks in plant, animal, and human systems (Richard JL and Payne G A (eds.), Council for Agricultural Science and Technology Task Force Report No. 139, Ames, Iowa, USA.
  3. Bondy, G.S., and Pestka, J.J. (2000). Immunomodulation by fungal toxin. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part B 3: 109-143.
  4. Leeson, S., Diaz, G., and Summers, J.D. (1995). Poultry metabolic disorders and mycotoxins. University Books, Guelph, Ontario, Canada.
  5. Ghosh, R.C., Chauhan, H.V.S., and Jah, G.J. (1991). Suppression of cell-mediated immunity by purified aflatoxin B1 in broiler chicks. Veterinary Immunology and Immunopathology 28: 165-172.
  6. Chen, X., Naehrer, K., and Applegate, T.J. (2016). Interactive effects of dietary protein concentration and aflatoxin B1 on performance, nutrient digestibility, and gut health in broiler chicks. 2016 Poultry Science 0:1–14.
  7. Völkel, I., Schröer-Merker, E., and Czerny, C-P. (2011). The carry-over of mycotoxins in products of animal origin with special regard to its implications for the European food safety legislation. Food and Nutrition Sciences 2: 852-867.
  8. Trucksess, M.W., Stoloff, L., Young, K., Wyatt, R.D., and Miller, B.L. (1983). Aflatoxicol and aflatoxins B1 and M1 in eggs and tissues of laying hens consuming aflatoxin-contaminated feed. Poult. Sci.: 2176-2182.
  9. Wyatt, R.D., Doerr, J.A., Hamilton, P.B., and Burmeister, H.R. (1975). Egg production, shell thickness, and other physiological parameters of laying hens affected by T-2 toxin. Appl. Microbiol.: 641-645.
  10. Bryden, W.L. (2012). Mycotoxin contamination of the feed supply chain: implications for animal productivity and feed security. Animal Feed Science and Technology: 134-158.
  11. Antonissen G., Devreese M., Van Immerseel F., De Baere S., Hessenberger S., Martel A., Croubels S. (2014). Chronic Exposure to Deoxynivalenol Has no Influence on the Oral Bioavailability of Fumonisin B1 in Broiler Chickens. Toxins 2015, 7, 560-571
  12. Grenier B. and Applegate T. J. (2013). Modulation of Intestinal Functions Following Mycotoxin Ingestion: Meta-Analysis of Published Experiments in Animals. Toxins 2013, 5, 396-430
  13. Akbari P., Braber S., Varasteh S., Alizadeh A., Garssen J., Fink‑Gremmels J. (2016). The intestinal barrier as an emerging target in the toxicological assessment of mycotoxins. Arch Toxicol DOI 10.1007/s00204-016-1794-8
  14. Pinton P., Tsybulskyy D., Lucioli J., Laffitte J., Callu P., Lyazhri F., Grosjean F., Bracarense A. P., Kolf-Clauw M., Oswald I. P. (2012). Toxicity of deoxynivalenol and its acetylated derivatives on the intestine: differential effects on morphology, barrier function, tight junction proteins, and mitogen-activated protein kinases. Toxicol Sci. 2012 Nov; 130(1):180-90.
  15. Awad, W.A., Böhm, J., Razzazi-Fazeli, E., Hulan, H.W., and Zentek, J. (2004). Effects of deoxynivalenol on feneral performance and electrophysiological properties of intestinal mucosa of broiler chickens. Poultry Science 83:1964-1972.
  16. Kubena, L.F., Harvey, R.B., Corrier, D.E., Huff, W.E., and Philips, T.D. (1987). Effects of feeding deoxynivalenol (DON, Vomitoxin)-contaminated wheat to female white leghorn chickens from day old through egg production. Poult. Sci., 66: 1612-1618.
  17. EFSA. (2004a). European Food Safety Authority. Opinion of the scientific panel on contaminants in the food chain on a request from the commission related to deoxynivalenol as undesirable substance in animal feed. EFSA Journal 73: 1-35.
  18. EFSA. (2004b). European Food Safety Authority. Opinion of the scientific panel on contaminants in the food chain on a request from the commission related to zearalenone as undesirable substance in animal feed. EFSA Journal 89: 1-41.
  19. Awad, W.A., Ghareeb, K., Böhm, J., Razzazi, E., Hellweg, P., and Zentek, J. (2008). The impact of the Fusarium toxin deoxynivalenol (DON) on poultry. International Journal of Poultry Science 7(9): 827-842.
  20. Pestka, J.J. (2007). Deoxynivalenol: toxicity, mechanisms and animal health risks. Animal Feed Science and Technology 137: 283-298.
  21. Harvey, R.B., Kubena, L.F., Huff, W.E., Elissalde, M.H., and Phillips, T.D. (1991). Hematologic and immunologic toxicity of deoxynivalenol (DON)-contaminated diets to growing chickens. Bull. Environ. Contam Toxicol.: 410-416.
  22. Kidd, M.T., Qureshi, M.A., Hagler, W.M. Jr., and Ali, R. (1997). T-2 tetraol is cytotoxic to a chicken macrophage cell line. Poult. Sci.: 311-313.
  23. Valenta, H. and Dänicke, S. (2005). Study on the transmission of deoxynivalenol and deepoxy-deoxynivalenol into eggs of laying hens using a high-performance liquid chromatography ultraviolet method with clean-up by immunoaffinity columns. Mol. Nutr. Food Res. 49: 779–785.
  24. Dänicke, S., Valenta, H., Ueberschär, K.H., and Matthes, S. (2007). On the interactions between Fusarium toxin-contaminated wheat and non-starch-polysaccharide hydrolysing enzymes in turkey diets on performance, health and carry-over of deoxynivalenol and zearalenone. British Poultry Science 48(1): 39-48.
  25. Chi, M.S., Robison, T.S., Mirocha, C.J., Behrens, J.C., and Shimoda, W. (1978). Transmission of radioactivity into eggs from laying hens administered tritium labeled T-2 toxin. Poult. Sci. 57: 1234-1238.
  26. WHO. (1990). World Health Organization. Selected mycotoxins: ochratoxins, trichothecenes, ergot. Environmental Health Criteria (105), Geneva.
  27. Zinedine, A., Soriano, J.M., Molto, J.C., and Manes, J. (2007). Review on the toxicity, occurrence, metabolism, detoxification, regulations and intake of zearalenone: an oestrogenic mycotoxin. Food Chem. Toxicol. 1-18.
  28. Dwivedi, P., and Burns, R.B. (1984). Effect of ochratoxin A on immunoglobulins in broiler chicks. Res. Vet. Sci.: 117-121.
  29. Al-Anati, L., and Petzinger, E. (2006). Immunotoxic activity of ochratoxin A. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics 29(2): 79-90.
  30. Grenier B., Schwartz-Zimmermann H.E., Caha S., Moll W.D. (2015). Dose-Dependent Effects on Sphingoid Bases and Cytokines in Chickens Fed Diets Prepared with Fusarium Verticillioides Culture Material Containing Fumonisins. Toxins 2015, 7, 1253-1272
  31. Antonissen G., Croubels S., Pasmans F., Ducatelle R., Eeckhaut V., Devreese M., Verlinden M., Haesebrouck F., Eeckhout M., De Saeger S., Antlinger B., Novak B., Martel A., Van Immerseel F. (2015) Fumonisins affect the intestinal microbial homeostasis in broiler chickens, predisposing to necrotic enteritis. Veterinary Research (2015) 46:98.
  32. Antonissen G., Eeckhaut V., Van Driessche K., Onrust L., Haesebrouck F., Ducatelle R., Moore R. J., Van Immerseel F. (2016) Microbial shifts associated with necrotic enteritis, Avian Pathology, DOI: 10.1080/03079457.2016.1152625. Online Journal.
  33. Poersch A.B., Trombetta F., Braga A. C. M., Boeira S. P., Oliveira M. S., Dilkin P., Mallmann C. A., Fighera M. R., Royes L. F. F., Oliveira M. S., Furian A. F. (2014) Involvement of oxidative stress in subacute toxicity induced by fumonisin B1 in broiler chicks. Veterinary Microbiology 174 (2014) 180–185
  34. Ledoux, D.R., Brown, T.P., Weibking, T.S., and Rottinghaus, G.E. (1992). Fumonisin toxicity in broiler chicks. J. Vet. Diagn. Invest: 330-333.
  35. Voss, K.A., Smith, G.W., and Haschek, W.M. (2007). Fumonisins: toxicokinetics, mechanism of action and toxicity. Animal Feed Science and Technology 137: 299-325.
  36. Weibking, T.S., Ledoux, D.R., Brown, T.P., and Rottinghaus, G.E. (1993). Fumonisin toxicity in turkey poults. J. Vet. Diagn. Invest: 75-83.
  37. Broomhead, J.N., Ledoux, D.R., Bermudez, A.J., and Rottinghaus, G.E. (2002). Chronic effects of fumonisin B1 in broilers and turkeys fed dietary treatments to market age. Poultry Science 81: 56-61.
  38. Javed, T., Dombrink-Kurtzman, M.A., Richard, J.L., Bennett, G.A., Coté, L.M., and Buck, W.B. (1995). Serohematologic alterations in broiler chicks on feed amended with Fusarium proliferatum culture material or fumonisin B1 and moniliformin. J Vet Diagn Invest 7: 520–526.
  39. Qureshi, M.A., and Hagler, W.M. Jr. (1992). Effect of fumonisin B1 exposure on chicken macrophage functions in vitro. Poult Sci, 71, 104-12.
  40. Prelusky, D.B., Rotter, B.A., and Rotter, R.G. (1994). Toxicology of mycotoxins. Mycotoxins in grains: compounds other than aflatoxin. Eds. Miller and Trenholm, Eagan press. St. Paul, MN: 359-403.
  41. Bandyopadhyay, R., Frederickson, D., McLaren, N., Odvody, G., and Ryley, M. (1998). Ergot: a new disease threat to sorghum in the Americas and Australia. Ranajit Bandyopadhyay. International Crops Research Institute for the Semi-Arid Tropics, Patancheru, India. Plant Disease 82(4): 356-367.
  42. EFSA. (2005). European Food Safety Authority. Opinion of the scientific panel on contaminants in food chain on a request from the commission related to ergot as undesirable substance in animal feed. EFSA Journal 225: 1-27.
  43. Huff, W.E., Kubena, L.F., Harvey, R.B., and Doerr, J.A. (1988), Mycotoxin interactions in poultry and swine. J. Anim. Sci. 66: 2351-2355.
  44. Grenier, B., Loureiro-Bracarense, A.P., Lucioli, J., Pacheco, G.D., Cossalter, A.M., Moll, W.D., Schatzmayr, G., and Oswald, I.P. (2011). Individual and combined effects of subclinical doses of deoxynivalenol and fumonisins in piglets. Mol. Nutr. Food Res. 55: 61–771.
  45. Grenier, B., Dohnal, I., Shanmugasundaram, R., Eicher, S.D., Selvaraj, R.K., Schatzmayr, G., and Applegate, T.J. (2016). Susceptibility of broiler chickens to coccidiosis when fed subclinical doses of deoxynivalenol and fumonisins – Special emphasis on the immunological response and the mycotoxin interaction. Toxins 2016, 8, 231; doi:10.3390/toxins8080231.
  46. Antonissen G., Van Immerseel F., Pasmans F., Ducatelle R., Janssens G.P.J., De Baere S., Mountzouris K. C., Su S., Wong E. A., De Meulenaer B., Verlinden M., Devreese M., Haesebrouck F., Novak B., Dohnal I., Martel A., Croubels S. Mycotoxins Deoxynivalenol and Fumonisins Alter the Extrinsic Component of Intestinal Barrier in Broiler Chickens. J. Agric. Food Chem



BIOMIN Holding GmbH, Erber Campus 1, 3131 Getzersdorf, Austria
Tel.: +43 2782 803 0, office@biomin.net