Print Version
   Close

URL: http://www.mycotoxins.info/ru/deistvie/svini/?tx_cookiepolicybar_pi1%5Baction%5D=close&tx_cookiepolicybar_pi1%5Bcontroller%5D=CookieBar&cHash=199d575f76afd19169463c73470893c8

Действие микотоксинов на свиней

Обычно полагают, что свиньи обладают высокой чувствительностью к контаминации микотоксинами; наиболее чувствительными являются молодые животные и ремонтные свинки.

Афлатоксины (АФЛ) при введении в высоких дозах могут приводить к гибели животных, но наибольший экономический ущерб обусловлен ухудшением репродуктивных способностей и показателей выращивания, угнетением иммунной функции и различными проявлениями патологического действия на органы и ткани.1 У поросят, вакцинированных овальбумином, после потребления загрязненного афлатоксином корма наблюдали снижение клеточно-опосредованного иммунитета и нарушение активации лимфоцитов.2 АФЛ отрицательно влиял на вес и гистопатологическую структуру тимуса, а также жизнеспособность альвеолярных макрофагов.3,4 Кроме того, сообщается о случаях накопления афлатоксина в организме свиньи – остаточные количества были выявлены в печени и мышечных тканях.5

больше об Афлатоксинах

Классическими признаками интоксикации алкалоидами спорыньи у свиней являются агалактия (из-за нарушений высвобождение пролактина), отказ от корма и последующее снижение прироста массы тела.28,29,30 Также часто наблюдаются симптомы, затрагивающие сердечно-сосудистую и центральную нервную системы, что является следствием повышения кровяного давления, вызывающего сужение кровеносных сосудов и сильное утеротоническое действие, приводящее к мертворожденности и снижению индекса супоросности.30,31 Последние исследования показывают, что накопление алкалоидов спорыньи в теле свиней незначительно, поскольку остатков этих микотоксинов в мясе, шпиге и сыворотке крови у животных, получавших самую высокую экспериментальную дозу – около 12 мг алкалоидов спорыньи в день, – не было обнаружено.32

больше об Алкалоидах спорыньи

В свиноводстве действие фумонизинов (ФУМ) представляет серьезную проблему. Многочисленные исследования подтвердили связь между отеком легких свиней и интоксикацией фумонизином.20 Даже при получении низких доз микотоксина у свиней наблюдался сильный отек легких, поражение печени и поджелудочной железы, снижение продуктивности и угнетение иммунной системы.20,21,22,23,24 Хроническое воздействие фумонизина B1 (ФУМ B1) уменьшало пролиферацию недифференцированных эпителиальных клеток кишечника свиньи, изменяло целостность кишечного эпителия и, как следствие, способствовало проникновению патогенов в организм.25 ФУМ ухудшает ответ на вакцинацию, сокращает уровень некоторых специфических антител и период защиты, обеспечиваемый вакциной. Выделение ФУМ с молоком свиноматок и накопление его в мясе (главным образом в печени и почках) может произойти только после длительного воздействия микотоксина в высоких дозах.5,21,26 С другой стороны, недавно обнаруженная гидролизованная форма фумонизина B1, представляющая собой продукт ферментативного расщепления фумонизина B1, не оказывала токсического действия ни на кишечник, ни на печень и не ухудшала морфологию кишечника свиней.27

больше о Фумонизинах

Токсическое действие охратоксина (ОХР) на свиней проявляется в основном гепатотоксичностью, снижением показателей продуктивности, нефротоксичностью и некрозом. Кроме того, при увеличении доз ОХР, скармливаемого свиньям, отмечено значительное линейное снижение суточного прироста массы тела.14,15,16 Также было показано, что этот микотоксин подавлял у свиней клеточно-опосредованный иммунный ответ, что приводило к снижению активности макрофагов и ослаблению стимуляции лимфоцитов.17 Кроме того, ОХР имеет тенденцию накапливаться в почках, печени и мышечной ткани, а также в сыворотке крови, поэтому представляет потенциальную опасность в пищевой цепочке продукции для человека.15

больше об Охратоксинах

Свиньи, в сравнении с другими животными, обладают высокой чувствительностью к ДОН. Наиболее часто наблюдаемыми последствиями действия ДОН являются ухудшение роста (анорексия и снижение эффективности использования питательных веществ), нарушение иммунной функции (усиление и угнетение) и снижение репродуктивной способности (уменьшение размера помета).6 Кроме того, было установлено, что ДОН подавляет всасывание питательных веществ в кишечнике, изменяет функции клеток кишечника и его барьерную функцию.7,8 Наибольшее остаточное содержание ДОН обнаруживают в желчи, и в меньшем количестве он присутствует в почках и сыворотке крови. Также остатки ДОН выявляли в печени и мышечной ткани.9 Что касается влияния на иммунитет, трихотецены, как правило, снижают пролиферацию лимфоцитов, активность макрофагов и выработку антител к определенным вакцинам, а также влияют на уровень иммуноглобулинов.10,11,12,13

больше о Трихотеценах

Несмотря на относительно низкий уровень острой токсичности, зеараленон (ЗЕН) может оказывать значительное влияние на воспроизводство свиней, поскольку свиньи относятся к числу наиболее чувствительных к этому микотоксину видов. Отрицательное действие на организм свиней обусловлено взаимодействием ЗЕН и его метаболитов с рецепторами эстрогенов. ЗЕН увеличивает частоту абортов и мертворожденности у супоросных свиноматок. Зараженный зеараленоном корм вызывает набухание и покраснение вульвы, ложную охоту и ложную супоросность.18 Исследования, изучающие накопление ЗЕН в мясе и других тканях, используемых в пищу, показали лишь незначительное отложение этого микотоксина в тканях. Кроме того, после применения ЗЕН в дозе 56 мкг/кг не было выявлено перехода в сыворотку крови ЗЕН и его основных метаболитов.19

больше о Зеараленоне

Синергическое действие у свиней

Около 80% заболеваний свиней связаны с ненадлежащими мерами обеспечения качества кормов, организации воспроизводства, условий содержания и биобезопасности, и только 20% имеют инфекционные причины - вирусную, бактериальную или паразитарную этиологию. Токсикологическое взаимодействие между микотоксинами усиливает токсическое действие даже при низком их содержании. Известно, что Fusarium graminearum и Fusarium culmorum производят несколько различных фузариотоксинов, включая ЗЕН и ДОН, оказывающих синергическое действие на свиней. В дополнение, анализ на содержание ДОН часто показывает сопутствующее содержание других фузариотоксинов, таких как другие трихотецены (токсин Т-2, ниваленол, диацетоксисирпенол), зеараленон и фумонизины.

Краткое описание синергического и аддитивного действия микотоксинов на свиней представлено на рисунке ниже.

Рисунок 1: Синергическое и аддитивное действие на свиней

АФЛ В1 - Афлатоксин B1; ФУМ В1 – Фумонизин В1; ДОН – Дезоксиниваленол; OХР – Охратоксин А; ЗЕН – Зеараленон; ФК – Фузариновая кислота; ДАС – Диацетоксисирпенол; ЦПК – Циклопиазоновая кислота; МОН - Монилиформин

Красная линия: синергическое действие
Пунктирная линия: аддитивное действие

Действие микотоксинов на свиней

АФЛ В1 - Афлатоксин B1 | АФЛ M1 - Афлатоксин M1 | ДОН - Дезоксиниваленол | ФУМ - Фумонизины | OХР – Охратоксин А | Т-2 - Т-2 Токсин | HT-2 - HT-2 Токсин | ЗЕН - Зеараленон | Спорынья - Алкалоиды спорыньи

Источники
  1. Dilkin P, Zorzete P, Mallmann CA, Gomes JDF, Utiyama CE, Oetting LL and Corrêa (2003) Toxicological effects of chronic low doses of aflatoxin B1 and fumonisin B1-cotnaining Fusarium moniliforme culture material in weaned piglets. Food and Chemical Toxicology 41: 1345-1353.
  2. Meissonnier GM, Pinton P, Laffitte J, Cossalter AM, Gong YY, Wild CP, Bertin G, Galtier P and Oswald IP (2008b) Immunotoxicity of aflatoxin B1: impairment of the cell-mediated response to vaccine antigen and modulation of cytokine expression. Toxicology and Applied Pharmacology 231: 142-149.
  3. Mocchegiani E, Corradi A, Santarelli L, Tibaldi A, DeAngelis E, Borghetti P, Bonomi A, Fabris N and Cabassi E (1998) Zinc, thymic endocrine activity and mitogen responsiveness (PHA) in piglets exposed to maternal aflatoxicosis B1 and G1. Veterinary Immunology and Immunopathology 62: 245-260.
  4. Liu BH, Yu FY, Chan MH and Yang YL (2002) The effects of mycotoxins, fumonisin B1 and aflatoxin B1 on primary swine alveolar macrophages. Toxicology and Applied Pharmacology 180: 197-204.
  5. Völkel I, Schröer-Merker E and Czerny C-P (2011) The carry-over of mycotoxins in products of animal origin with special regard to its implications for the European food safety legislation. Food and Nutrition Sciences 2: 852-867.
  6. Waché YJ, Valat C, Postollec G, Bougeard S, Burel C, Oswald IP and Fravalo P (2009) Impact of deoxynivalenol on the intestinal microflora of pigs. Int. J. Mol. Sci. 2009, 10: 1-17.
  7. Pinton P, Accensi F, Beauchamp E, Cossalter AM, Callu P, Grosjean F and Oswald IP (2008) Ingestion of deoxynivalenol (DON) contaminated feed alters the pig vaccinal immune responses .Toxicol. Lett. 177: 215-222.
  8. Pinton P, Nougayrede JP and Del Rio JC (2009) The food contaminant deoxynivalenol, decreases intestinal barrier permeability and reduces claudin expression. Toxicol Appl Pharmacol 237: 41–48.
  9. Döll S, Dänicke S and Valenta H (2008) Residues of deoxynivalenol (DON) in pig tissue after feeding mash or pellet diets containing low concentrations. Molecular nutrition & food research 52: 727-34.
  10. Pang VF, Lambert RJ, Felsburg PJ, Beasley VR, Buck WB and [11] WM (1988) Experimental T-2 toxicosis in swine following inhalation exposure: clinical signs and effects on hematology, serum biochemistry, and immune response. Fundamental and Applied Toxicology 11: 100-109.
  11. Vandenbroucke V, Croubels S, Verbrugghe E, Boyen F, De BP, Ducatelle R, Rychlik I, Haesebrouck F and Pasmans F (2009) The mycotoxin deoxynivalenol promotes uptake of Salmonella typhimurium in porcine macrophages, associated with ERK1/2 induced cytoskeleton reorganization. Veterinary Research 40: 64-75.
  12. Overnes G, Matre T, Sivertsen T, Larsen HJS, Langseth W, Reitan LJ and Jansen JH (1997) Effects of diets with graded levels of naturally deoxynivalenol-contaminated oats on immune response in growing pigs. Journal of Veterinary Medicine A 44: 539-550.
  13. Goyarts T, Danicke S, Tiemann U and Rothkotter HJ (2006) Effect of the Fusarium toxin deoxynivalenol (DON) on IgA, IgM and IgG concentrations and proliferation of porcine blood lymphocytes. Toxicology In Vitro 20: 858-867.
  14. Quiroga MA, Risso MA and Perfumo CJ (2007) T-2 mycotoxin intoxication in piglets: a systemic pathological approach and apoptotic immunohistochemical studies. Braz. J. Vet. Pathol 2 (1): 16–22.
  15. Battacone G, Nudda A and Pulina G (2010) Effects of ochratoxin A on livestock production. Toxins 2010 (2): 1796-1824.pig
  16. Lawlor PG and Lynch PB (2001) Mycotoxins in pig feeds 2: clinical aspects. Irish Veterinary Journal: 172-176.
  17. Harvey RB, Elissalde MH, Kubena LF, Weaver EA, Corrier DE and Clement BA (1992) Immunotoxicity of ochratoxin A to growing gilts. American Journal of Veterinary Research 53: 1966-1970.
  18. Zinedine A, Soriano JM, Molto JC and Manes J (2007) Review on the toxicity, occurrence, metabolism, detoxification, regulations and intake of zearalenone: an oestrogenic mycotoxin. Food Chem. Toxicol. 1-18.
  19. Goyarts D, Dänicke H, Valenta and Ueberschär KH (2007) Carry-over of Fusarium toxins (deoxynivalenol and zearalenone) from naturally contaminated wheat to pigs. Food Additives and Contaminants 24(4): 369- 380.
  20. Haschek WM, Gumprecht LA, Smith G, Tumbleson ME and Constable PD (2001) Fumonisin toxicosis in swine: an overview of porcine pulmonary edema and current perspectives. Environmental Health Perspectives 109(2): 251-257.
  21. Grenier B, Lucioli J, Pacheco G, Cossalter A.M, Moll W.D, Loureiro-Bracarense A.P, Schatzmayr G, Oswald I.P (2011) Individual and combined effects of subclinical doses of deoxynivalenol and fumonisins in piglets. Mol. Nutr. Food Res. 55 (5), 761 - 771
  22. Rotter BA, Prelusky DB and Pestka JJ (1996) Toxicology of deoxynivalenol (vomitoxin). Journal of Toxicology and Environmental Health 48: 1-34.
  23. Harrison LR, Colvin BM, Greene JT, Newman LE and Cole Jr. JR (1990). Pulmonary edema and hydrothorax in swine produced by fumonisin B1, a toxic metabolite of Fusarium moniliforme. J. Vet. Diagn. Invest.: 217-221.
  24. Voss KA, Smith GW and Haschek WM (2007) Fumonisins: toxicokinetics, mechanism of action and toxicity. Animal Feed Science and Technology 137: 299-325.
  25. Bouhet S and Oswald IP (2005) The effects of mycotoxins, fungal food contaminants, on the intestinal epithelial cell-derived innate immune response. Veterinary Immunology and Immunopathology 108: 199-209.
  26. Meyer K, Mohr K, Bauer J, Horn P and Kovács M (2003) Residue formation of fumonisin B1 in porcine tissues. Food Additives and Contaminants 20 (7): 639–647.
  27. Grenier B, Bracarense A.P.F.L, Schwartz H, Trumel C, Cossalter A.M, Schatzmayr G, Kolf-Clauw M, Moll W.D, Oswald I.P (2012) The low intestinal and hepatic toxicity of hydrolyzed fumonisin B1 correlates with its inability to alter the metabolism of sphingolipids. Biochemical Pharmacology 83, 1465 - 1473
  28. Bandyopadhyay R, Frederickson D, McLaren N, Odvody G and Ryley M (1998) Ergot: a new disease threat to sorghum in the Americas and Australia Ranajit Bandyopadhyay. International Crops Research Institute for the Semi-Arid Tropics, Patancheru, India. Plant Disease 82(4): 356-367.
  29. Blaney BJ, Mckenzie RA, Walters JR, Taylor LF, Bewg WS, Ryley MJ and Maryam R (2000) Sorghum ergot (Claviceps africana) associated with agalactia and feed refusal in pigs and dairy cattle. Aust Vet J 78: 102-107.
  30. Kopinski JS, Blaney BJ, Murray S-A and Downing JA (2008) Effect of feeding sorghum ergot (Claviceps africana) to sows during mid-lactation on plasma prolactin and litter performance. Journal of Anim Physiology and Anim Nut 92: 554–561.
  31. Kopinski JS, Blaney BJ, Downing JA, Mcveigh JF and Murray S-A (2007) Feeding sorghum ergot (Claviceps africana) to sows before farrowing inhibits milk production. Aust Vet J 85:169–176.
  32. Mainka S, Dänicke S, Böhme H, Ueberschär KH, Polten S and Hüther L (2005) The influence of ergot-contaminated feed on growth and slaughtering performance, nutrient digestibility and carry over of ergot alkaloids in growing-finishing pigs. Archives of Animal Nutrition 59(6): 377-395.



BIOMIN Holding GmbH, Erber Campus 1, 3131 Getzersdorf, Austria
Tel.: +43 2782 803 0, office@biomin.net